1、梭氏法

　　將容有1滴細胞懸液的小管﹐置于盛有氫氧化鉀或五氧化二磷吸水劑的大試管中﹐用真空泵抽至1、3帕時﹐將大試管密封保存。這是為減少細胞死亡率而采取的一種不經(jīng)凍結﹑緩慢脫水的干燥保藏法﹐適用于多種細菌﹑真菌。

　　2、冷凍真空干燥法

　　將細胞懸液每0、1~0、2毫升注入一無菌安瓿瓶﹐于-40℃預凍1小時﹐再于-20~30℃﹑真空度為13、3帕的條件下脫水。在脫水過程后期﹐安瓿瓶外溫度可逐漸升至25℃。脫水后的樣品含水量應在3%以下。后﹐將安瓿瓶保持真空度1、3帕﹐用火焰溶封﹐置10℃保存。為防止細胞在凍結和脫水過程中損傷或死亡﹐要用保護劑制備細胞懸液。保護劑有脫脂牛奶﹑血清﹑10%蔗糖或葡萄糖溶液等﹐其作用是通過氧和離子鍵對水和細胞所產(chǎn)生的親合力來穩(wěn)定細胞成分的構型。此法適用于病毒﹑衣原體﹑枝原體﹑細菌﹑放線菌﹑酵母菌﹑絲狀真菌等的長期保存﹐是當前保藏菌種的一個重要方法。但是﹐鹽桿菌﹑發(fā)光桿菌﹑黏桿菌﹑阿舒囊霉﹑多囊霉﹑擔子菌中的大多數(shù)屬種不適用于此法保存。

　　3、液態(tài)氮超低溫凍結法

　　用甘油或二甲亞(DMSO)作保護劑制備細胞懸液﹐分裝入無菌安瓿瓶﹐每管0、2毫升﹐在控制溫度下降速率為1℃/分鐘的條件下預凍至-40℃﹐然后立即放入液氮生物貯存罐中氣相(-150℃)保存。恢復培養(yǎng)時﹐先直接侵入38℃水浴中解凍5~10分鐘﹐再種植于適宜培養(yǎng)基內培養(yǎng)。這是根據(jù)在低于-130℃時一切生化反應處于停止狀態(tài)﹑微生物也不能進行代謝活動而設計的凍結法。為避免凍死﹑凍傷和細胞內形成大量冰晶﹐用保護劑制備懸液并控制預凍時的冷卻速率和解凍時融化速率。微生物的大多數(shù)屬種適于慢速凍結和快速解凍。此法適用于病毒﹑枝原體﹑各種細菌﹑放線菌﹑酵母菌﹑絲狀真菌﹑藍藻等。

　　4、定期移植法

　　將菌種接種于所要求的培養(yǎng)基上﹐在適溫度中培養(yǎng)﹐至靜止期或產(chǎn)生成熟的孢子時﹐置入5℃的冰箱(或冰庫)保存。在培養(yǎng)和保存的過程中﹐由于代謝產(chǎn)物的累積而改變了原菌的生活條件﹐結果菌落群體中的個體就不斷衰老和死亡﹐因此每5~15天或1~4個月重新移植一次﹐具體間隔時間因種而異。凡能人工培養(yǎng)的微生物都可用此法保存。此法不需特殊設備﹐但煩瑣﹐費時﹐而且經(jīng)常移植容易引起菌種退化。

　　5、礦油封藏法

　　將化學純的液體石蠟(礦油)經(jīng)高壓蒸氣滅菌﹐放在40℃恒溫箱中蒸發(fā)其中的水分﹐然后注入斜面培養(yǎng)物中﹐使液面高出斜面約1厘米。將試管直立﹐放在15~20℃室溫中保存。由于在斜面培養(yǎng)物上覆蓋一層液體﹐既能隔絕空氣﹐又能防止培養(yǎng)基因水分蒸發(fā)而干燥﹐可以延長菌種保藏的時間。但注入的液體必須不與培養(yǎng)基混溶﹑對菌種無毒﹐不易被利用和揮發(fā)。此法適用于酵母菌﹑芽孢桿菌﹔不適用于固氮菌﹑乳酸桿菌﹑明串珠菌﹑法門氏菌和毛霉目中的大多數(shù)屬種。此法簡便易行﹐但必須注意防火和污染。

　　6、沙土管法

　　將沙或土過篩﹑烘干﹑裝管﹑滅菌﹑然后將菌種制成孢子懸液滴入其中混勻﹐放到盛氯化鈣的干燥器里吸除水分﹐干燥后保存或用火焰封管后保存。吸附在干燥沙土上的孢子因缺水而處于休眠狀態(tài)﹐可保存較長時期。此法適用于芽孢桿菌﹑梭狀芽孢桿菌﹑放線菌﹑鐮刀菌等。

　　7、麩皮法

　　將麩皮制成培養(yǎng)基﹐培養(yǎng)要保存的菌種﹐待生長良好后﹐置干燥器中保存。這是根據(jù)中國釀造酒﹑醋﹑醬時制曲的經(jīng)驗所采用的一種保藏方法﹐適用于谷物微生物區(qū)系中的種類。

　　8、L-干燥法

　　又稱液體干燥法或真空干燥法﹐用含3%谷氨酸鈉的0、1M磷酸緩沖溶液(pH7、0)做分散媒﹐將待保藏的微生物制成高濃度的細胞懸液﹐滴入無菌安瓿瓶中﹐每管0、05毫升﹔將安瓿瓶固定在多歧管上﹐并以水浴保持安瓿瓶內樣品溫度為10℃﹐在13、3~1、3帕的真空度下干燥﹐火焰封管保存。此法不經(jīng)凍結﹐用真實泵迅速抽乾﹐可避免菌種的凍傷或死亡。廣泛應用于病毒﹑噬菌體﹑細菌﹑酵母菌﹑藍藻﹑原生動物等。